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特殊染色包括纤维组织染色（masson染色、天狼猩红染色、VG染色等），糖类染色（PAS染色等），神经组织染色（LFB染色、ES染色等），骨相关染色（Von Kossa染色、甲苯胺蓝染色、Goldner三色法染色等），脂质染色（油红O染色），植物标本染色（甲苯胺蓝染色、PBS染色等），具体需求可以联系技术老师。
1.动物解剖后，尽快取材，放入10倍自身体积的固定液中，并选取合适的标本瓶，充分固定24小时以上，取材及固定时避免挤压，造成人为损伤；
2.心肝脾肺肾、肿瘤等常规组织需用4%多聚甲醛固定后送样，眼球、脂肪、睾丸等需用特殊固定液固定，骨头需脱钙后进行实验；
3.送样时备注切片要求，对位置有特殊要求的，如脑。请附带参考图；
4.若需要白片，请备注切片数量；
5.需注明所送样品种属（大鼠、小鼠）及组织类型（如心、肝、脾、肺、肾、肿瘤、肠等），有自带荧光的，备注好荧光类型；
6.拍照请写明拍照倍数、拍照部位，详细描述拍照目的，或可提供相应参考文献；
7.做免疫组化、免疫荧光，需自行提供经过验证的一抗抗体来做，若需要我们提供抗体的，请先联系我们的技术人员咨询实验室是否有相关抗体。
1.切片质量：切片必须完整、均匀、平整、无气泡、无褶皱，有利于染色时的冲洗和切片的牢固附黏。如果切片不平整，会导致染色不均匀，颜色深浅不一。
2.固定和脱水：组织固定要新鲜，离体的组织应尽快进行固定，以防自溶和腐败。固定时间和固定液浓度要适当，避免组织硬化和收缩。脱水要彻底干净，组织块 取材不能太大过厚，以防脱水不完全。
3.染色前的准备：染色前应将切片在适当的缓冲液中浸泡，调节pH值至适宜范围，以防止组织酸化或碱化影响细胞核着色。同时，切片需要通过一系列的酒精浓度 逐渐脱水，并用透明剂如苯酚、二甲苯等进行透明化，以便于染色。
4.染色操作：染色时间长短需要根据染剂对组织的染色作用、室温条件、切片厚薄、固定液的类别、染液的新旧等因素进行调节。染色过程中要控制分色时间，一般在显微镜下观察细胞核染色清楚而细胞质基本无色为佳。分化也是关键步骤，需要掌握好分化时间和分化剂的使用。
5.封片和观察：封片时要用中性树脂，盖片要大于组织块的面积，以防日后褪色。观察时需要在显微镜下观察染色效果，如有需要可进行调整。
