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产品定义
脂质（Lipids）是一类疏水性或两性小分子，根据脂质代谢途径研究计划”（LIPID MAPS，Lipid metabolites and pathways strategy）提出的脂质分类系统将脂质代谢物分为八大类。靶向脂质组学使用LC-MS/MS平台，主要是对覆盖5大类型27亚类中的特定脂质分子共计1000+种脂质代谢物进行选择性、特异性的质谱 MRM 定量分析，该方法灵敏度高、准确性高且通量高。
实验流程
检测指标
物质二级分类 | 物质数 | |
脂肪酸类 | 肉碱、游离脂肪酸 | 40+ |
甘油脂类 | 单甘油酯、甘油二酯、甘油三酯 | 480+ |
甘油磷脂类 | 溶血磷脂酰胆碱、溶血磷脂酰乙醇胺、溶血磷脂酰甘油、溶血磷脂酰肌醇、溶血磷脂酰丝氨酸、磷脂酸、磷脂酰胆碱、磷脂酰乙醇胺、1-烷基，2-酰基磷脂酰乙醇胺、1-烯基，2-酰基磷脂酰乙醇胺、磷脂酰甘油、磷脂酰肌醇、磷脂酰丝氨酸 | 500+ |
鞘脂类 | 鞘氨醇、神经酰胺、二氢神经酰胺、葡萄糖神经酰胺、己糖神经酰胺、乳糖神经酰胺、鞘磷脂 | 10+ |
固醇脂类 | 胆固醇、胆固醇酯 | 20+ |
总数 | 1000+ | |
产品优势
1. 以标准品为参照，根据保留时间和质谱图谱的精确匹配获得目标代谢物的相对含量；
2. 对符合规则的离子对进行信号采集，去除不符合规则离子信号的干扰。
3. 具有特异性强、灵敏度高、准确性高的特点。
| 样品类型 | 送样量 | 预处理和保存 |
| 动物组织 | ≥200 mg | PBS 洗涤去除残留血液和污染物，冲洗干净。用组织剪或手术刀将组织剪切成 1cm3 左右的小块，样品称重，等量分装。液氮速冻， -80°C 保存，干冰运输。 |
| 血清 | ≥300 μL | 收集好的全血室温静置 30-60 min，或者 4°C 放置 2h，3000 g 离心 10 min，取上清，液氮速冻，-80°C 保存，干冰运输。 |
| 血浆 | ≥300 μL | 收集好的全血加入抗凝剂（推荐采用肝素抗凝剂，不建议采用柠檬酸或者 EDTA），室温静止 30 分钟，1300g-2000g 离心 10min，取上清，液氮速冻，-80°C 保存，干冰运输。 |
| 尿液 | ≥200 μL | 5000×g 4°C 离心 30-60min，取上清， -80°C 保存，干冰运输。 |
| 粪便 | ≥300 mg | 新鲜粪便样本收集好后，立即用液氮速冻处理15 min，保存至-80℃冰箱 |
| 肠道内容物 | ≥300 mg | 新鲜肠道内容物样本收集好后，立即用液氮速冻处理15 min，保存至-80℃冰箱 |
| 乳汁 | ≥200 μL | 收集母乳，-80°C 保存，干冰运输。 |
| 唾液 | ≥500 μL | 1000g-2000g 4°C 离心 10min，（或使用 0.22μm 滤膜过滤），取上清，-80°C 保存，干冰运输。 |
| 淋巴液、脑脊液、羊水、胆汁等体液 | ≥200 μL | 1000g-2000g 4°C 离心 10min，（或使用 0.22μm 滤膜过滤），取上清，-81°C 保存，干冰运输。 |
| 穿刺样品 | ≥500 mg | 收集样品，采用 PBS 洗涤去除样品表面泥土或污染物（务必清洗干净！！），样品称重，等量分装，液氮速冻，-80°C 保存，干冰运输。 |
| 植物种子、果肉 | ≥200 mg | 收集样品，样品称重，等量分装，液氮速冻，-80°C 保存，干冰运输。 |
| 草本植物、藻类、蕨类 | ≥200 mg | 收集样品，采用 PBS 洗涤去除样品表面泥土或污染物（务必清洗干净！！），样品称重，等量分装，液氮速冻，-80°C 保存，干冰运输。 |
| 植物花粉 | ≥50 mg | 收集样品，样品称重，等量分装，液氮速冻，-80°C 保存，干冰运输。 |
| 植物体液 | ≥300 μL | 5000×g 4°C 离心 30-60min，取上清，-80°C 保存，干冰运输。 |
| 软体动物组织 | ≥500 mg | 收集样品，采用 PBS 洗涤去除样品表面泥土或污染物（务必清洗干净！！），样品称重，等量分装，液氮速冻，-80°C 保存，干冰运输。 |
| 低等细菌细胞 | ≥10^9 | 离心收集等量菌体（保证每份收集的菌体细胞数量一致！！），采用 PBS 清洗三次，每次清洗后 5000g 4°C离心 5 分钟，完全弃去上清，收集在 1.5ml 离心管中。液氮速冻，-80°C 保存，干冰运输。 |
| 菌体（真菌类） | ≥500 mg | 收集菌体（保证每份收集的菌体数量或者重量一致！！），采用 PBS 清洗三次，每次清洗后 5000g 4°C 离心 5 分钟，完全弃去上清，收集在 1.5ml 离心管中。液氮速冻，-80°C 保存，干冰运输。 |
| 悬浮培养细胞 | ≥10^7 | 离心收集悬浮细胞（保证每份收集的细胞数量一致！！），采用 PBS 清洗两遍，然后采用生理盐水（0.9%氯化钠溶液）洗一遍， 每次清洗后采用小于 1000g 离心力 4°C 低速离心 3 分钟，完全弃去上清（上述整个过程需尽量迅速操作），收集在 1.5ml 离心管中。液氮速冻后-80°C 保存，干冰运输。 |
| 贴壁培养细胞 | ≥10^7 | 收集培养好的贴壁细胞（保证每份收集的细胞数量一致！！）去除干净培养基，采用预冷的 PBS 洗两遍，然后再次加入预冷的PBS，把培养容器中的所有细胞都收集下来（一定要刮取干净！！），收集在 1.5 mL 离心管中， 4°C 低速离心，完全弃去上清（上述整个过程需尽量迅速操作）。细胞沉淀在液氮速冻后-80°C保存，干冰运输。 |
| 细胞培养上清 | ≥10 mL | 1000 g，4°C离心3 分钟，取上清，-80°C 保存，干冰运输。 |
1、样本采集和处理：样本的采集和处理对于靶向脂质组学研究至关重要。应确保样本的代表性、新鲜性和稳定性，避免在采样和存储过程中发生脂质降解或氧化。在采集样本时，应选择合适的采集方法和容器，并在低温条件下尽快进行处理和分析。
2、样本制备：在靶向脂质组学研究中，样本的制备过程对于结果的准确性和可靠性至关重要。应选择合适的提取方法，如有机溶剂提取、超声波辅助提取等，以最大限度地提取样本中的脂质成分。同时，还需要进行样本的净化和浓缩，以去除杂质并提高脂质组分的纯度。
3、仪器选择和条件优化：靶向脂质组学研究需要使用高灵敏度的仪器进行分析，如质谱仪、高效液相色谱仪等。在选择仪器时，应综合考虑仪器的分辨率、灵敏度、稳定性和可重复性等因素。同时，还需要对仪器条件进行优化，如电离方式、扫描范围、碰撞能量等，以获得最佳的检测结果。
4、数据分析和解释：靶向脂质组学研究产生的大量数据需要进行适当的分析和解释。应选择合适的统计方法和数据分析软件，对数据进行预处理、归一化、差异分析等步骤，以提取有用的信息。同时，还需要结合生物学背景知识进行数据解释，揭示脂质在生物体内的功能和作用机制。
5、质量控制和重复性验证：在靶向脂质组学研究中，质量控制和重复性验证是确保结果准确性和可靠性的重要手段。应定期进行仪器的校准和维护，确保仪器的稳定性和准确性。同时，还需要对实验过程进行严格的质量控制，如使用内标或外标进行定量、进行平行实验等。此外，还需要对结果进行重复性验证，以评估实验的稳定性和可靠性。
